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超滤离心管 如何在20%的乙醇中保存?Ultra15ml

时间:2022-08-16 12:02:28来源:网络整理

[帮助] 我将使用微孔超滤离心管从细胞培养上清液中浓缩蛋白质。我在花园里找到了一些关于浓缩蛋白的帖子,但仍有一些问题。我还是向园里的大虾们请教。

我们订购了 Amicon Ultra 15 毫升试管。不知道以前有没有人做过。请给一些关于速度和时间的建议。另外,离心前细胞上清液是否需要预处理?

如何在离心后回收蛋白质时尽量减少损失?

如果要重复使用试管,用 NaOH 清洗后如何保存在 20% 乙醇中? 4度的时候是蘸乙醇防止的,还是管子里装的是乙醇?

【答题要点】

propeg

我用的是5ml的试管,转速4000rpm,8分钟,可以将5ml的样品溶液浓缩到200ul左右。仅供参考超滤离心管,具体情况以您的样品为准。

我存放 5ml 试管的方法是将内试管取出并浸泡在 20% 乙醇的烧杯中。四次扑救。

这种管子可以脱盐浓缩,但根据截留半径不适合蛋白质分离。

我用3500g 4度离心,时间可以自己控制,看你的最终浓缩体积,我一般用200ul左右。

不要离心太久。不同的蛋白质以不同的速度浓缩。有些需要长时间的离心,而有些则很好。当然,这也和你的蛋白质是否比较纯,用什么缓冲液,蛋白质的浓度有关。因此,离心时,应短时间观察自己的浓缩速度。不要一下子全部凝结,甚至形成沉淀超滤离心管,这得不偿失。

另外,他们的管子是一次性设计的,所以如果你想重复使用,不要把速度开得太高,4000-4500RPM几乎是一样的,重复使用的时候检查一下有没有是管壁上的任何裂缝。现在的管子似乎不像以前那么坚固了。

使用后,用纯净水清洗试管。当离心力很小时,清洗膜,然后按照propeg主任说的把它收起来。如果用了很多次感觉有点堵,可以用NaOH气泡,离心几分钟,应该会有改善的。

祝实验顺利。

纯化多肽的分子量截止值可选择10倍,纯化球蛋白的分子量截止值可选择3倍。如果管子要重复使用,转速应设置在最大转速(G)的80%左右,否则塑料时间长了会开裂。 ,膜也容易出问题。

离心后,用MilliQ水清洗试管,浸泡在水中,4度保存。不放心可以放一些防腐剂,不过这个管以后只能用于类似样品的离心。

超滤会丢失蛋白质是正常的。如果样品量很大,请分批离心。不要做太久。如果可能,在离心前尽量去除样品中的一些杂质。

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